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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/63044
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IN VITRO SUSCEPTIBILITY TO FOSFOMYCIN IN CLINICAL AND ENVIRONMENTAL EXTENDED-SPECTRUM BETA-LACTAMASE PRODUCING AND/OR CIPROFLOXACIN-NON-SUSCEPTIBLE ESCHERICHIA COLI ISOLATES
Fosfomycin
Extended-spectrum Beta-lactamase
Anti-Bacterial Agents
Autor
Ribeiro, Victoria Stadler Tasca
Ball, Larissa
Ito, Carmen Antonia Sanches
Andrade, Ana Paula de
Arend, Lavinia Nery Villa Stangler
Suss, Paula Hansen
Nogueira, Keite da Silva
Walflor, Haniel Siqueira Mortagua
Faoro, Helisson
Kuczera, Lia Carolina Soares de Medeiros
Vicenzi, Fernando José
Tuon, Felipe Francisco
Ball, Larissa
Ito, Carmen Antonia Sanches
Andrade, Ana Paula de
Arend, Lavinia Nery Villa Stangler
Suss, Paula Hansen
Nogueira, Keite da Silva
Walflor, Haniel Siqueira Mortagua
Faoro, Helisson
Kuczera, Lia Carolina Soares de Medeiros
Vicenzi, Fernando José
Tuon, Felipe Francisco
Afiliación
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil. / Universidade Estadual de Ponta Grossa. Divisão de Microbiologia. Ponta Grossa, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil. / Universidade Estadual de Ponta Grossa. Divisão de Microbiologia. Ponta Grossa, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil. / Laboratório Central do Estado do Paraná. São José dos Pinhais, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Federal do Paraná. Departamento de Patologia Básica. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Ciências e Tecnologias Aplicadas em Saúde. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Biologia Celular. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Ciências e Tecnologias Aplicadas em Saúde. Curitiba, PR, Brasil.
Laboratório Municipal de Curitiba. Curitiba, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil. / Universidade Estadual de Ponta Grossa. Divisão de Microbiologia. Ponta Grossa, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil. / Universidade Estadual de Ponta Grossa. Divisão de Microbiologia. Ponta Grossa, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil. / Laboratório Central do Estado do Paraná. São José dos Pinhais, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Federal do Paraná. Departamento de Patologia Básica. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Ciências e Tecnologias Aplicadas em Saúde. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Biologia Celular. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Ciências e Tecnologias Aplicadas em Saúde. Curitiba, PR, Brasil.
Laboratório Municipal de Curitiba. Curitiba, PR, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica do Paraná. Escola de Medicina. Programa de Graduação em Ciências da Saúde. Laboratório de Doenças Infecciosas Emergentes. Curitiba, PR, Brasil.
Resumen en ingles
Extended-spectrum beta-lactamase producing and ciprofloxacin-non-susceptible Escherichia coli are clinical and environmental issues. We evaluated the susceptibility profile of fosfomycin in non-susceptible E. coli isolated from urine and the environment. We measured the activity of fosfomycin against 319 and 36 E. coli strains from urine and environmental isolates, respectively, collected from rivers. Fosfomycin resistance profiles were investigated using the minimal inhibitory concentration (MIC), according to the Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) and the European Committee for Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST) guidelines. Antibiotic susceptibility testing revealed that 5% and 6.6% of urine samples were non-susceptible to fosfomycin according to CLSI and EUCAST guidelines, respectively. The fosfomycin MIC50/90 was 0.5/4 mg/L. Of the 36 E. coli isolates from river water, 11.1% and 13,8% were non-susceptible to fosfomycin according to CLSI and EUCAST, respectively (range ≤0.25 ≥512 mg/L). All the isolates with MIC ≥512 mg/L for fosfomycin showed the fosA3 gene. Fosfomycin resistance was more frequent in the environment than in clinical samples.
Palabras clave en portugues
ESBLPalabras clave en ingles
Gram-Negative BacteriaFosfomycin
Extended-spectrum Beta-lactamase
Anti-Bacterial Agents
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