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ArtigoDireito Autoral
Acesso aberto
Objetivos de Desenvolvimento Sustentável
03 Saúde e Bem-EstarColeções
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ASSESSMENT OF CROSS-REACTIVITY OF CHIMERIC TRYPANOSOMA CRUZI ANTIGENS WITH CRITHIDIA SP. LVH-60A: IMPLICATIONS FOR ACCURATE DIAGNOSTICS
Tripanossomatídeos
Crithidia sp. LVH-60A
Diagnóstico
Reação cruzada
Antígeno recombinante
Trypanosomatids
Crithidia sp. LVH-60A
Diagnosis
Cross-reaction
Recombinant antigen
Autor(es)
Afiliação
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário/EBSERH. Laboratório de Imunologia e Biologia Molecular. Aracaju, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário/EBSERH. Laboratório de Imunologia e Biologia Molecular. Aracaju, SE, Brasil / Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário (BSERH). Departamento de Medicina. Aracaju, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário/EBSERH. Laboratório de Imunologia e Biologia Molecular. Aracaju, SE, Brasil / Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário (BSERH). Departamento de Medicina. Aracaju, SE, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil.
Prefeitura Municipal de Tremedal. Secretaria Municipal de Saúde. Estratégia Saúde da Família do Brasil. Tremedal, BA, Brasil.
Faculdade Santo Agostinho (FASA). Faculdade de Medicina. Educação Tecnologia Saúde, Vitória da Conquista, BA, Brasil.
Instituto de Biologia Molecular do Paraná. Curitiba, PR, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Ciência e Tecnologia Aplicada em Saúde. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Biologia Molecular e de Sistemas de Tripanossomatídeos. Curitiba, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Biologia Estrutural e Engenharia de Proteínas. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário/EBSERH. Laboratório de Imunologia e Biologia Molecular. Aracaju, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário/EBSERH. Laboratório de Imunologia e Biologia Molecular. Aracaju, SE, Brasil / Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário (BSERH). Departamento de Medicina. Aracaju, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário/EBSERH. Laboratório de Imunologia e Biologia Molecular. Aracaju, SE, Brasil / Universidade Federal de Sergipe. Hospital Universitário (BSERH). Departamento de Medicina. Aracaju, SE, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil.
Prefeitura Municipal de Tremedal. Secretaria Municipal de Saúde. Estratégia Saúde da Família do Brasil. Tremedal, BA, Brasil.
Faculdade Santo Agostinho (FASA). Faculdade de Medicina. Educação Tecnologia Saúde, Vitória da Conquista, BA, Brasil.
Instituto de Biologia Molecular do Paraná. Curitiba, PR, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Ciência e Tecnologia Aplicada em Saúde. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Biologia Molecular e de Sistemas de Tripanossomatídeos. Curitiba, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Biologia Estrutural e Engenharia de Proteínas. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório Avançado de Saúde Pública. Salvador, BA, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Resumo em Inglês
This study focuses on developing accurate immunoassays for diagnosing Chagas disease (CD), a challenging task due to antigenic similarities between Trypanosoma cruzi and other parasites, leading to cross-reactivity. To address this challenge, chimeric recombinant T. cruzi antigens (IBMP-8.1, IBMP-8.2, IBMP-8.3, and IBMP-8.4) were synthesized to enhance specificity and reduce cross-reactivity in tests. While these antigens showed minimal cross-reactivity with leishmaniasis, their performance with other trypanosomatid infections was unclear. This study aimed to assess the diagnostic potential of these IBMP antigens for detecting CD in patients with Crithidia sp. LVH-60A, a parasite linked to visceral leishmaniasis-like symptoms in Brazil. This study involved seven Crithidia sp. LVH-60A patients and three Leishmania infantum patients. The results indicated that these IBMP antigens displayed 100% sensitivity, with specificity ranging from 87.5% to 100%, and accuracy values between 90% and 100%. No cross-reactivity was observed with Crithidia sp. LVH-60A, and only one L. infantum-positive sample showed limited cross-reactivity with IBMP-8.1. This study suggests that IBMP antigens offer promising diagnostic performance, with minimal cross-reactivity in regions where T. cruzi and other trypanosomatids are prevalent. However, further research with a larger number of Crithidia sp. LVH-60A-positive samples is needed to comprehensively evaluate antigen cross-reactivity.
Palavras-chave
Doença de chagasTripanossomatídeos
Crithidia sp. LVH-60A
Diagnóstico
Reação cruzada
Antígeno recombinante
Palavras-chave em inglês
Chagas diseaseTrypanosomatids
Crithidia sp. LVH-60A
Diagnosis
Cross-reaction
Recombinant antigen
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