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Tipo de documento
ArtigoDireito Autoral
Acesso aberto
Objetivos de Desenvolvimento Sustentável
03 Saúde e Bem-EstarColeções
- IOC - Artigos de Periódicos [12841]
Metadata
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GENETIC ABLATION AND PHARMACOLOGICAL BLOCKADE OF BRADYKININ B1 RECEPTOR UNVEILED A DETRIMENTAL ROLE FOR THE KININ SYSTEM IN CHAGAS DISEASE CARDIOMYOPATHY
Autor(es)
Oliveira, Ana Carolina
VIcentino, Amanda Roberta Revoredo
Andrade, Daniele
Pereira, Isabela Resende
Saboia-Vahia, Leonardo
Moreira, Otacílio da Cruz
Pinto, Carla Eponina Carvalho
Mota, Julia Barbalho da
Maciel, Leonardo
Pereira, Glaucia Vilar
Pesquero, João B.
Lannes-Vieira, Joseli
Sirois, Pierre
Carvalho, Antônio Carlos Campos de
Scharfstein, Julio
VIcentino, Amanda Roberta Revoredo
Andrade, Daniele
Pereira, Isabela Resende
Saboia-Vahia, Leonardo
Moreira, Otacílio da Cruz
Pinto, Carla Eponina Carvalho
Mota, Julia Barbalho da
Maciel, Leonardo
Pereira, Glaucia Vilar
Pesquero, João B.
Lannes-Vieira, Joseli
Sirois, Pierre
Carvalho, Antônio Carlos Campos de
Scharfstein, Julio
Afiliação
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia das Interações. Rio de janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Virologia Molecular. Plataforma de PCR em Tempo Real RPT09A. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Imunobiologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Núcleo Multidisciplinar de Pesquisa em Biologia. Campus Duque de Caxias, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia das Interações. Rio de janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Biofísica. São Paulo, SP, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia das Interações. Rio de janeiro, RJ, Brasil.
Department of Microbiology and Immunology, Faculty of Medicine, Université Laval, Quebec, QC G1V 0A6, Canada.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro Nacional de Biologia Estrutural e Bio-Imagem. Rio de janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Medicina Regenerativa, Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia das Interações. Rio de janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Virologia Molecular. Plataforma de PCR em Tempo Real RPT09A. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Imunobiologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Núcleo Multidisciplinar de Pesquisa em Biologia. Campus Duque de Caxias, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia das Interações. Rio de janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Biofísica. São Paulo, SP, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia das Interações. Rio de janeiro, RJ, Brasil.
Department of Microbiology and Immunology, Faculty of Medicine, Université Laval, Quebec, QC G1V 0A6, Canada.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro Nacional de Biologia Estrutural e Bio-Imagem. Rio de janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Medicina Regenerativa, Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Programa de Imunobiologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Resumo em Inglês
Chagas disease, the parasitic infection caused by Trypanosoma cruzi, afflicts about 6 million
people in Latin America. Here, we investigated the hypothesis that T. cruzi may fuel heart parasitism
by activating B1R, a G protein-coupled (brady) kinin receptor whose expression is upregulated in
inflamed tissues. Studies in WT and B1R/ mice showed that T. cruzi DNA levels (15 days post
infection—dpi) were sharply reduced in the transgenic heart. FACS analysis revealed that frequencies
of proinflammatory neutrophils and monocytes were diminished in B1R/ hearts whereas
CK-MB activity (60 dpi) was exclusively detected in B1R+/+ sera. Since chronic myocarditis and
heart fibrosis (90 dpi) were markedly attenuated in the transgenic mice, we sought to determine
whether a pharmacological blockade of the des-Arg9-bradykinin (DABK)/B1R pathway might alleviate
chagasic cardiomyopathy. Using C57BL/6 mice acutely infected by a myotropic T. cruzi strain
(Colombian), we found that daily treatment (15–60 dpi) with R-954 (B1R antagonist) reduced heart
parasitism and blunted cardiac injury. Extending R-954 treatment to the chronic phase (120–160 dpi),
we verified that B1R targeting (i) decreased mortality indexes, (ii) mitigated chronic myocarditis, and
(iii) ameliorated heart conduction disturbances. Collectively, our study suggests that a pharmacological
blockade of the proinflammatory KKS/DABK/B1R pathway is cardioprotective in acute and
chronic Chagas disease.
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