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- IOC - Artigos de Periódicos [12642]
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ACCELERATING THE MORPHOGENETIC CYCLE OF THE VIRAL VECTOR AEDES AEGYPTI LARVAE FOR FASTER LARVICIDAL BIOAASYS
Ciclo morfogenético
Larvas
Vetor viral
Aedes aegypti
Bioensaios larvicidas
Author
Affilliation
Universidade Federal do Paraná. Programa de Mestrado em Ambiente Urbano e Industrial. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Federal do Paraná. Departamento de Farmácia. Curitiba, PR, Brasil / Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil..
Universidade Federal do Paraná. Departamento de Farmácia. Curitiba, PR, Brasil,
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil..
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil..
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento de Zoologia. Laboratório de Morfologia e Fisiologia de Culicidae e Chironomidae; Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento de Zoologia. Laboratório de Morfologia e Fisiologia de Culicidae e Chironomidae; Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Controle e Fisiologia de Vetores de Artrópodes. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Federal do Paraná. Departamento de Farmácia. Curitiba, PR, Brasil / Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil..
Universidade Federal do Paraná. Departamento de Farmácia. Curitiba, PR, Brasil,
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil..
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil..
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento de Zoologia. Laboratório de Morfologia e Fisiologia de Culicidae e Chironomidae; Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento de Zoologia. Laboratório de Morfologia e Fisiologia de Culicidae e Chironomidae; Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Departamento Acadêmico de Química e Biologia. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Ambiental. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Controle e Fisiologia de Vetores de Artrópodes. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract
Any bioassay to test new chemically synthesized larvicides or phytolarvicides against Culicidae and more harmful mosquito species, such as Aedes aegypti and Aedes albopictus, which specifically transmit dengue, yellow fever, chikungunya viral fevers as well as Zika virus, or Anopheles gambiae, a vector for malaria and philariasis, requires thousands of well-developed larvae, preferably at the fourth instar stage. The natural morphogenetic cycle of Aedes spp., in the field or in the laboratory, may extend to 19 days at room temperature (e.g., 25°C) from the first permanent contact between viable eggs and water and the last stage of larval growth or metamorphosis into flying adults. Thus, accelerated sequential molting is desirable for swifter bioassays of larvicides. We achieved this goal in Aedes aegypti with very limited strategic and low-cost additions to food, such as coconut water, milk or its casein, yeast extract, and to a lesser extent, glycerol. The naturally rich coconut water was excellent for quickly attaining the population of instar IV larvae, the most advanced one before pupation, saving about a week, for subsequent larvicidal bioassays. Diluted milk, as another food source, allowed an even faster final ecdysis and adults are useful for mosquito taxonomical purpose.
Keywords in Portuguese
AcelerandoCiclo morfogenético
Larvas
Vetor viral
Aedes aegypti
Bioensaios larvicidas
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