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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/40804
BIOGENIC SILVER NANOPARTICLES REDUCE ADHERENCE, INFECTION, AND PROLIFERATION OF TOXOPLASMA GONDII RH STRAIN IN HELA CELLS WITHOUT INFLAMMATORY MEDIATORS INDUCTION
Autor(es)
Machado, Laís Fernanda
Sanfelice, Raquel Arruda
Bosqui, Larissa Rodrigues
Assolini, João Paulo
Scandorieiro, Sara
Navarro, Italmar Teodorico
Cataneo, Allan Henrique Depieri
Wowk, Pryscilla Fanini
Nakazato, Gerson
Bordignon, Juliano
Pavanelli, Wander Rogerio
Conchon-Costa, Ivete
Costa, Idessania Nazareth
Sanfelice, Raquel Arruda
Bosqui, Larissa Rodrigues
Assolini, João Paulo
Scandorieiro, Sara
Navarro, Italmar Teodorico
Cataneo, Allan Henrique Depieri
Wowk, Pryscilla Fanini
Nakazato, Gerson
Bordignon, Juliano
Pavanelli, Wander Rogerio
Conchon-Costa, Ivete
Costa, Idessania Nazareth
Afiliação
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Microbiologia. Laboratório de Bacteriologia Básica e Aplicada. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Medicina Veterinária Preventiva. Laboratório de Zoonoses e Saúde Pública. Londrina, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Virologia Molecular. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Virologia Molecular. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Microbiologia. Laboratório de Bacteriologia Básica e Aplicada. Londrina, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Virologia Molecular. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Microbiologia. Laboratório de Bacteriologia Básica e Aplicada. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Medicina Veterinária Preventiva. Laboratório de Zoonoses e Saúde Pública. Londrina, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Virologia Molecular. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Virologia Molecular. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Microbiologia. Laboratório de Bacteriologia Básica e Aplicada. Londrina, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Virologia Molecular. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Departamento de Patologia Experimental. Laboratório de Imunoparasitologia das Doenças Negligenciadas e Câncer. Londrina, PR, Brasil.
Resumo em Inglês
The highlights of biogenic silver nanoparticles (AgNp-Bio) include low toxicity - depending on size and concentration - and efficient antiparasitic activity. Therefore, the objective of this study was to assess the action of the AgNp-Bio on HeLa cells in an infection with strain of RH Toxoplasma gondii. Firstly, we performed a cellular viability test and characterized the AgNp-Bio to proceed with the infection of HeLa cells with T. gondii to be treated using AgNp-Bio or conventional drugs. Subsequently, we determined the level of standard cytokines Th1/Th2 as well as the content of nitric oxide (NO) and reactive oxygen species (ROS). Results indicated a mean size of 69 nm in diameter for the AgNp-Bio and obtained a dose-dependent toxicity. In addition, the concentrations of 3 and 6 μM promoted a significant decrease in adherence, infection, and intracellular proliferation. We also found lower IL-8 and production of inflammatory mediators. Thus, the nanoparticles reduced the adherence, infection, and proliferation of ROS and NO, in addition to immunomodulating the IL-8. Therefore, our data proved relevant to introduce a promising therapeutic alternative to toxoplasmosis.
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