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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/37881
IMPROVING THE SERODIAGNOSIS OF CANINE LEISHMANIA INFANTUM INFECTION IN GEOGRAPHICAL AREAS OF BRAZIL WITH DIFFERENT DISEASE PREVALENCE
Canine leishmaniasis
Serodiagnosis
Antibodies
Recombinant proteins
Autor(es)
Ramírez, Laura
Moura, Luana Dias de
Mateus, Natalia Lopes Fontoura
Moraes, Milene Hoehr de
Nascimento, Leopoldo Fabrício Marçal do
Melo, Nailson de Jesus
Taketa, Lucas Bezerra
Catecati, Tatiana
Huete, Samuel G.
Penichet, Karla
Piranda, Eliane Mattos
Oliveira, Alessandra Gutierrez de
Steindel, Mario
Barral Netto, Manoel
Cruz, Maria do Socorro Pires e
Barral, Aldina Maria Prado
Soto, Manuel
Moura, Luana Dias de
Mateus, Natalia Lopes Fontoura
Moraes, Milene Hoehr de
Nascimento, Leopoldo Fabrício Marçal do
Melo, Nailson de Jesus
Taketa, Lucas Bezerra
Catecati, Tatiana
Huete, Samuel G.
Penichet, Karla
Piranda, Eliane Mattos
Oliveira, Alessandra Gutierrez de
Steindel, Mario
Barral Netto, Manoel
Cruz, Maria do Socorro Pires e
Barral, Aldina Maria Prado
Soto, Manuel
Afiliação
Universidad Autónoma de Madrid. Centro de Biología Molecular Severo Ochoa. Facultad de Ciencias. Departamento de Biología Molecular. Madrid, Spain.
Universidade Federal do Piauí. Centro de Ciências Agrárias. Teresina, PI, Brasil.
Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Centro de Ciências Biológicas e da Saúde. Laboratório de Parasitologia. Campo Grande, MS, Brasil.
Universidade Federal de Santa Catarina. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. Florianópolis, SC, Brasil.
Universidade Federal do Piauí. Centro de Ciências Agrárias. Teresina, PI, Brasil.
Universidade Federal do Piauí. Centro de Ciências Agrárias. Teresina, PI, Brasil.
Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Centro de Ciências Biológicas e da Saúde. Laboratório de Parasitologia. Campo Grande, MS, Brasil.
Universidade Federal de Santa Catarina. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. Florianópolis, SC, Brasil.
Universidad Autónoma de Madrid. Centro de Biología Molecular Severo Ochoa. Facultad de Ciencias. Departamento de Biología Molecular. Madrid, Spain.
Universidad Autónoma de Madrid. Centro de Biología Molecular Severo Ochoa. Facultad de Ciencias. Departamento de Biología Molecular. Madrid, Spain.
Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Centro de Ciências Biológicas e da Saúde. Laboratório de Parasitologia. Campo Grande, MS, Brasil.
Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Centro de Ciências Biológicas e da Saúde. Laboratório de Parasitologia. Campo Grande, MS, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Universidade Federal do Piauí. Centro de Ciências Agrárias. Teresina, PI, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Universidad Autónoma de Madrid. Centro de Biología Molecular Severo Ochoa. Facultad de Ciencias. Departamento de Biología Molecular. Madrid, Spain.
Universidade Federal do Piauí. Centro de Ciências Agrárias. Teresina, PI, Brasil.
Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Centro de Ciências Biológicas e da Saúde. Laboratório de Parasitologia. Campo Grande, MS, Brasil.
Universidade Federal de Santa Catarina. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. Florianópolis, SC, Brasil.
Universidade Federal do Piauí. Centro de Ciências Agrárias. Teresina, PI, Brasil.
Universidade Federal do Piauí. Centro de Ciências Agrárias. Teresina, PI, Brasil.
Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Centro de Ciências Biológicas e da Saúde. Laboratório de Parasitologia. Campo Grande, MS, Brasil.
Universidade Federal de Santa Catarina. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. Florianópolis, SC, Brasil.
Universidad Autónoma de Madrid. Centro de Biología Molecular Severo Ochoa. Facultad de Ciencias. Departamento de Biología Molecular. Madrid, Spain.
Universidad Autónoma de Madrid. Centro de Biología Molecular Severo Ochoa. Facultad de Ciencias. Departamento de Biología Molecular. Madrid, Spain.
Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Centro de Ciências Biológicas e da Saúde. Laboratório de Parasitologia. Campo Grande, MS, Brasil.
Universidade Federal de Mato Grosso do Sul. Centro de Ciências Biológicas e da Saúde. Laboratório de Parasitologia. Campo Grande, MS, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Universidade Federal do Piauí. Centro de Ciências Agrárias. Teresina, PI, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Universidad Autónoma de Madrid. Centro de Biología Molecular Severo Ochoa. Facultad de Ciencias. Departamento de Biología Molecular. Madrid, Spain.
Resumo em Inglês
Serodiagnosis of Leishmania infantum infection in dogs relies on the detection of antibodies
against leishmanial crude extracts or parasitic defined antigens. The expansion of canine leishmaniasis
from geographical areas of Brazil in which the infection is endemic to regions in
which the disease is emerging is occurring. This fact makes necessary the analysis of the
serodiagnostic capabilities of different leishmanial preparations in distinct geographical locations.
In this article sera from dogs infected with Leishmania and showing the clinical form of
the disease, were collected in three distinct Brazilian States and were tested against soluble
leishmanial antigens or seven parasite individual antigens produced as recombinant proteins.
We show that the recognition of soluble leishmanial antigens by sera from these animals
was influenced by the geographical location of the infected dogs. Efficacy of the diagnosis
based on this crude parasite preparation was higher in newly endemic regions when compared
with areas of high disease endemicity. We also show that the use of three of the recombinant
proteins, namely parasite surface kinetoplastid membrane protein of 11 kDa (KMP-11), and
two members of the P protein family (P2a and P0), can improve the degree of sensitivity without
adversely affecting the specificity of the diagnostic assays for canine leishmaniasis, independently
of the geographical area of residence. In addition, sera from dogs clinically healthy
but infected were also assayed with some of the antigen preparations. We demonstrate that
the use of these proteins can help to the serodiagnosis of Leishmania infected animals with sub-clinical infections. Finally, we propose a diagnostic protocol using a combination of KMP-11,
P2a y P0, together with total leishmanial extracts.
Palavras-chave em inglês
LeishmaniaCanine leishmaniasis
Serodiagnosis
Antibodies
Recombinant proteins
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