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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/31601
Tipo de documento
ArtigoDireito Autoral
Acesso restrito
Data de embargo
2030-01-01
Coleções
- IOC - Artigos de Periódicos [12642]
Metadata
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METHODOLOGICAL INNOVATIONS FOR THE STUDY OF IRREPLACEABLE SAMPLES REVEAL GIARDIASIS IN EXTINCT ANIMALS (NOTHROTHERIUM MAQUINENSE AND PALAEOLAMA MAIOR)
Coprolite
Immunodiagnosis
Ancient DNA
Megafauna
Paleoparasitologia
Autor(es)
Afiliação
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Escola Nacional de Saúde Pública Sergio Arouca. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Escola Nacional de Saúde Pública Sergio Arouca. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Escola Nacional de Saúde Pública Sergio Arouca. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Estadual de Londrina. Londrina, PR, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Departamento de Microbiologia e Parasitologia. Laboratório de Biologia Molecular de Parasitos e de Paleoparasitologia. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Escola Nacional de Saúde Pública Sergio Arouca. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Pontifícia Universidade Católica de Minas Gerais. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Resumo em Inglês
The use of diagnostic methods that prevent irreplaceable samples (from museum collections, archaeological and paleontological samples) of being consumed or that increase their yield is relevant. For museum collections, archaeological and paleontological samples it is essential to conserve samples, subsamples or portions for future research. We are addressing methods for conservation of irreplaceable samples that could be fully consumed. Innovations in methodologies that are used in studies of Paleoparasitology and Paleomicrobiology will contribute to the preservation of collections. Therefore, to the development of archaeology and paleontology in the future, we evaluated whether the discarded material of the immunochromatography test could be used for molecular diagnosis and vice versa. We used a genotyped experimental coprolite positive for Giardia duodenalis. The diagnosis was positive for giardiasis in both cases. This methodology can be corroborated with the coprolite of a Paleolama maior (extinct llama) previously diagnosed for G. duodenalis with an immunoenzymatic test. The residue of the pre-digestion step of the DNA extraction before adding Proteinase K was confirmed positive with the immunochromatographic test. Also, the DNA extraction residue from a coprolite of Nothrotherium maquinense (ground sloth) was tested positive with immunochromatographic test for G. duodenalis. These are the oldest findings for G. duodenalis confirming that this intestinal parasite occurred among Northeastern Brazilian Megafauna animals from the late Pleistocene period, correlated to human occupation. The relevance of these results will allow the study by different methodological approaches from a small amount of material, reusing discarded materials.
Palavras-chave em inglês
PaleoparasitologyCoprolite
Immunodiagnosis
Ancient DNA
Megafauna
Paleoparasitologia
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