Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem:
https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/30426
Tipo
ArtículoDerechos de autor
Acceso abierto
Fecha del embargo
2020-01-01
Colecciones
Metadatos
Mostrar el registro completo del ítem
EFFECT OF THE PRESERVATIVE AND TEMPERATURE CONDITIONS ON THE STABILITY OF LEISHMANIA INFANTUM PROMASTIGOTES ANTIGENS APPLIED IN A FLOW CYTOMETRY DIAGNOSTIC METHOD FOR CANINE VISCERAL LEISHMANIASIS
FC-AFPA-IgG
IFAT
ELISA
Leishmaniose visceral canina
diagnostico
FC-AFPA-IgG
IFAT
ELISA
Canine visceral leishmaniasis
Diagnosis
Autor
Afiliación
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Renè Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Renè Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Biologia das Interações Celulares. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Imunologia e Genômica de Parasitos. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Renè Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Renè Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Biologia das Interações Celulares. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Laboratório de Imunologia e Genômica de Parasitos. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Laboratório de Pesquisas Clínicas. Ouro Preto, MG, Brazil/Universidade Federal de Ouro Preto. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brazil
Resumen en ingles
The control of canine visceral leishmaniasis (CVL) is imperative, but euthanasia of seropositive dogs has been highly criticized. Commonly used, immunodiagnostic tests, including Dual-Path Platform®, enzyme-linked immunosorbent assay, and immunofluorescent antibody test, have failed at detecting asymptomatic dogs in endemic areas. In this context, new serological methods are needed. Flow cytometry serology has demonstrated potential as a test with excellent performance for CVL. In this study, we proposed to establish the best conditions for preserving Leishmania infantum promastigote antigens employed in this serology test. During 12 months of follow-up, promastigotes were maintained in different preservatives (phosphate-buffered saline with 3% fetal bovine serum, phenol 0.35%, thimerosal 0.01%, and formaldehyde 0.5%) and stored at 3 distinct temperatures (25 °C, 4 °C, and −20 °C). During the study period, the morphological characteristics of the promastigotes were assessed by flow cytometry according to the forward and side scatter parameters and also under optical microscopic analysis. Reactivity performance was evaluated as the percentage of positive fluorescent parasites in the sera of naturally infected and noninfected dogs. Microbiological analysis was performed at 2 time points, the first and sixth months, to rule out contamination of stored promastigotes. Taken together, our results indicated that the best conditions to preserve fixed L. infantum antigens were storage in formaldehyde at 4 °C. Promastigotes presented the best morphological profile, with appropriate antigenic stability even at 4 °C, in an inexpensive preservative for a long period of conservation.
Palabras clave en portugues
citometria de fluxoFC-AFPA-IgG
IFAT
ELISA
Leishmaniose visceral canina
diagnostico
Palabras clave en ingles
Flow cytometryFC-AFPA-IgG
IFAT
ELISA
Canine visceral leishmaniasis
Diagnosis
Compartir