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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/16900
Tipo de documento
ArtigoDireito Autoral
Acesso restrito
Data de embargo
2030-01-01
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Metadata
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APPLICABILITY OF AN OPTIMIZED NON-CONVENTIONAL FLOW CYTOMETRY METHOD TO DETECT ANTI-TRYPANOSOMA CRUZI IMMUNOGLOBULIN G FOR THE SEROLOGICAL DIAGNOSIS AND CURE ASSESSMENT FOLLOWING CHEMOTHERAPEUTIC TREATMENT OF CHAGAS DISEASE
Autor(es)
Matos, Christiane Santos
Reis, Jordana Grazziela Alves Coelho dos
Rassi, Anis
Luquetti, Alejandro Ostermayer
Dias, João Carlos Pinto
Santos, Silvana Maria Eloi
Gomes, Izabelle Teixeira
Avelar, Danielle Marquete Vitelli
Wendling, Ana Paula Barbosa
Rocha, Roberta Dias Rodrigues
Carvalho, Andréa Teixeira de
Pascoal, Vanessa Peruhype Magalhães
Andrade, Mariléia Chaves de
Martins Filho, Olindo Assis
Reis, Jordana Grazziela Alves Coelho dos
Rassi, Anis
Luquetti, Alejandro Ostermayer
Dias, João Carlos Pinto
Santos, Silvana Maria Eloi
Gomes, Izabelle Teixeira
Avelar, Danielle Marquete Vitelli
Wendling, Ana Paula Barbosa
Rocha, Roberta Dias Rodrigues
Carvalho, Andréa Teixeira de
Pascoal, Vanessa Peruhype Magalhães
Andrade, Mariléia Chaves de
Martins Filho, Olindo Assis
Afiliação
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Goiás. Faculdade de Medicina. Goiânia, GO, Brazil
Universidade Federal de Goiás. Faculdade de Medicina. Goiânia, GO, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Triatomíneos e Epidemiologia da Doença de Chagas. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Medicina. Departamento de propedêutica Complementar. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil /Universidades Estadual de Montes Claros. Departamento de Fisiopatologia. Montes Claros, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Goiás. Faculdade de Medicina. Goiânia, GO, Brazil
Universidade Federal de Goiás. Faculdade de Medicina. Goiânia, GO, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Triatomíneos e Epidemiologia da Doença de Chagas. Belo Horizonte, MG, Brazil
Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Medicina. Departamento de propedêutica Complementar. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil /Universidades Estadual de Montes Claros. Departamento de Fisiopatologia. Montes Claros, MG, Brazil
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brazil
Resumo em Inglês
One of the challenges on immunodiagnostic of Chagas disease in endemic areas has been the search for more practical and safe antigenic preparation that provides tests with higher sensitivity and specificity, with low cross-reactivity. A new approach using fixedTrypanosoma cruzi epimastigotes to detect IgG reactivity was investigated previously. In order to continue this investigation, this study aimed at optimizing the flow cytometry-based method to the diagnosis of Chagas disease patients after specific chemotherapy. To achieve our goal, serum samples from 93 subjects — 52 adults chronically infected byT. cruzi, and 41 uninfected controls were tested by flow cytometry. Secondly, serum samples from patients Treated Cured and Treated Uncured from Chagas disease were also tested to evaluate the potential of the method on assessing cure. After establishing the ideal serum dilution and cut off, 121 serum samples from patients with other endemic infections were tested to check cross-reactivity. The results showed that parasite staining with Evan's blue dye eliminated debris, allowing trustworthy analysis of anti-fixed epimastigote IgG reactivity. The applicability of the method to diagnose Chagas disease was confirmed by the high sensitivity (98.1%) and specificity (100%) found. This method also contributed for post-therapeutic assessment of cure, identifying 94.1% of Treated Uncured and 83.3% of Treated Cured patients. Cross-reactivity was observed in a very low number (6.7%). On the whole, these data highly recommend the use of anti-fixed T. cruzi epimastigote IgG reactivity by flow cytometry to the diagnosis and cure monitoring of Chagas disease in endemic areas.
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