Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem:
https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/14436
Tipo
ArtículoDerechos de autor
Acceso abierto
Colecciones
- IOC - Artigos de Periódicos [12642]
- PE - IAM - Artigos de Periódicos [1085]
Metadatos
Mostrar el registro completo del ítem
USEFULNESS OF REAL TIME PCR TO QUANTIFY PARASITE LOAD IN SERUM SAMPLES FROM CHRONIC CHAGAS DISEASE PATIENTS
Trypanosoma cruzi
Carga parasitária
Diagnóstico molecular
real time PCR
Trypanosoma cruzi
Parasite load
Molecular diagnosis
Autor
Afiliación
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães-CPqAM. Departamento de Imunologia. Recife, PE, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães-CPqAM. Departamento de Imunologia. Recife, PE, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães-CPqAM. Departamento de Imunologia. Recife, PE, Brasil.
Universidade de Pernambuco (UPE). Ambulatório de doença de Chagas e Insuficiência Cardíaca do Pronto Socorro Cardiológico de Pernambuco (PROCAPE). Recife, PE, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães-CPqAM. Departamento de Imunologia. Recife, PE, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães-CPqAM. Departamento de Imunologia. Recife, PE, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães-CPqAM. Departamento de Imunologia. Recife, PE, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães-CPqAM. Departamento de Imunologia. Recife, PE, Brasil.
Universidade de Pernambuco (UPE). Ambulatório de doença de Chagas e Insuficiência Cardíaca do Pronto Socorro Cardiológico de Pernambuco (PROCAPE). Recife, PE, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Aggeu Magalhães-CPqAM. Departamento de Imunologia. Recife, PE, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa Integrado de Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Resumen en ingles
BACKGROUND:
Inconclusive results of serological diagnosis in Chagas disease have an important impact on blood banks worldwide, reflecting in the high number of discarded bags or in an increased transmission by blood transfusion. Molecular techniques such as qPCR have been used for diagnosis and to monitor Trypanosoma cruzi load in peripheral blood samples. A promising perspective refers to the possibility of parasite DNA detection in serum, taking advantage in using the same samples collected for serological screening.
METHODS:
In order to evaluate the effectiveness of a qPCR strategy for detecting and quantifying T. cruzi DNA in serum, we selected 40 chronic Chagas disease patients presenting different clinical manifestations: Cardiac (23), Digestive (4), Mixed form [cardiodigestive] (7), and asymptomatic (6). Twenty seronegative individuals from non-endemic areas were included as controls. Samples were extracted using QIAamp DNA mini kit (QIAGEN) and qPCR was performed in a multiplex format with TaqMan probes for the nuclear satellite DNA of T. cruzi and for the human RNase P gene. In addition, DNA migration to serum during blood coagulation was assessed using a commercial exogenous control (Exo IPC, Applied Biosystems) in a separate qPCR reaction.
RESULTS:
The comparative duplex qPCR analysis revealed that, even with an increase in Ct values, it was possible to detect all DNA targets in serum. In addition, the same linearity range for T. cruzi quantification (from 10(5) to 0.5 par. eq./mL) between serum, blood or culture samples (T. cruzi epimastigotes - Cl Brener strain) was found. When patient samples were evaluated, no significant differences in parasite load between the distinct clinical manifestations were found for both blood and serum samples. Moreover, median values of parasite burden were 1.125 and 1.230 par. eq./mL for serum and blood, respectively. Using serology as gold standard, we found 95% sensitivity for T. cruzi detection in serum and 97.5% for blood, and 100% specificity for both samples.
CONCLUSIONS:
Taken together, our data indicate the potential of using serum samples for molecular diagnosis and parasite load quantification by qPCR, suggesting its use in reference laboratories for the diagnosis of Chagas disease patients.
Palabras clave en portugues
Doença de ChagasTrypanosoma cruzi
Carga parasitária
Diagnóstico molecular
Palabras clave en ingles
Chagas Diseasereal time PCR
Trypanosoma cruzi
Parasite load
Molecular diagnosis
Compartir