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CLOSTRIDIUM DIFFICILE INFECTION AMONG IMMUNOCOMPROMISED PATIENTS IN RIO DE JANEIRO, BRAZIL AND DETECTION OF MOXIFLOXACIN RESISTANCE IN A RIBOTYPE 014 STRAIN
Autor(es)
Afiliação
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Zoonoses Bacterianas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
University Hospital of Wales. Public Health Wales Microbiology. Anaerobe Reference Unit. Cardiff, Wales, UK.
University Hospital of Wales. Public Health Wales Microbiology. Anaerobe Reference Unit. Cardiff, Wales, UK.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro.Hospital Universitário Clementino Fraga Filho. Coordenação de Controle de Infecções Hospitalares. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Zoonoses Bacterianas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
University Hospital of Wales. Public Health Wales Microbiology. Anaerobe Reference Unit. Cardiff, Wales, UK.
University Hospital of Wales. Public Health Wales Microbiology. Anaerobe Reference Unit. Cardiff, Wales, UK.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro.Hospital Universitário Clementino Fraga Filho. Coordenação de Controle de Infecções Hospitalares. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Centro de Ciências da Saúde. Instituto de Microbiologia Prof. Paulo de Góes . Departamento de Microbiologia Médica. Laboratório de Biologia de Anaeróbios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Resumo em Inglês
Clostridium difficile is a Gram-positive spore forming anaerobic bacterium, often associated with nosocomial diarrhea and pseudomembranous colitis. The acquisition of this organism occurs primarily in hospitals through accidental ingestion of spores, and its establishment and proliferation in the colon results from the removal of members of the normal intestinal flora during or after antibiotic therapy. In this study, stool samples from patients admitted to the University Hospital Clementino Fraga Filho (HUCCF/UFRJ) were screened for C. difficile toxins with an ELISA test and cultured with standard techniques for C. difficile isolation. A total of 74 stool samples were collected from patients undergoing antibiotic therapy between August 2009 and November 2010, only two (2.7%) were positive in the ELISA test and culture. A third isolate was obtained from a negative ELISA test sample. All cases of CDI were identified in patients with acute lymphoid or myeloid leukemia. Genotypic and phenotypic characterization showed that all strains carried toxins A and B genes, and belonged to PCR-ribotypes 014, 043 and 046. The isolated strains were sensitive to metronidazole and vancomycin, and resistant to ciprofloxacin and levofloxacin. Resistance to moxifloxacin, was present in the strain from PCR-ribotype 014, that showed an amino acid substitution in gyrB gene (Asp 426 → Asn). This is the first time that this mutation in a PCR-ribotype 014 strain has been described in Brazil.
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