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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/64129
FELINE LEISHMANIASIS IN AN ANIMAL SHELTER IN NORTHEASTERN BRAZIL: CLINICAL ASPECTS, COINFECTIONS, MOLECULAR DETECTION, AND SEROLOGICAL STUDY OF A NEW RECOMBINANT PROTEIN
Diagnóstico imunológico
rKDDR-plus
Coinfecções por Leishmania
Sinais clínicos
Immunological diagnosis
rKDDR-plus
Leishmania coinfections
Clinical signs
Author
Nascimento, Luiz Fernando de Jesus
Gomes, Ana Carolina Amado
Torres, Filipe Dantas
Santos, Fred Luciano Neves
Neres, Wemerson de Santana
Souza Filho, Pedro Estevão de
Santos, Mariana Tibúrcio
Silva, José Rodrigo Santos
Resende, Cláudia Fideles
Reis, Jenner Karlisson Pimenta dos
Jain, Sona
Cunha, João Luís Reis
Fujiwara, Ricardo Toshio
Dolabella, Silvio Santana
Gomes, Ana Carolina Amado
Torres, Filipe Dantas
Santos, Fred Luciano Neves
Neres, Wemerson de Santana
Souza Filho, Pedro Estevão de
Santos, Mariana Tibúrcio
Silva, José Rodrigo Santos
Resende, Cláudia Fideles
Reis, Jenner Karlisson Pimenta dos
Jain, Sona
Cunha, João Luís Reis
Fujiwara, Ricardo Toshio
Dolabella, Silvio Santana
Affilliation
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Aggeu Magalhães. Recife, PE, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Presidência. Vice Presidência de Pesquisa e Desenvolvimento Tecnológico. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz, Salvador, BA, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Ciências Fisiológicas. Laboratório Avançado de Saúde Pública. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Veterinária. Departamento de Medicina Veterinária Preventiva. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Veterinária. Departamento de Medicina Veterinária Preventiva. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil / Universidade Tiradentes. Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia Industrial. Aracaju, SE, Brasil.
York Biomedical Research Institute and Department of Biology. University of York. York, United Kingdom.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil / Universidade Federal de Minas Gerais. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Aggeu Magalhães. Recife, PE, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Presidência. Vice Presidência de Pesquisa e Desenvolvimento Tecnológico. Programa Translacional Integrado em Doença de Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz, Salvador, BA, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Ciências Fisiológicas. Laboratório Avançado de Saúde Pública. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Veterinária. Departamento de Medicina Veterinária Preventiva. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Faculdade de Veterinária. Departamento de Medicina Veterinária Preventiva. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil / Universidade Tiradentes. Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia Industrial. Aracaju, SE, Brasil.
York Biomedical Research Institute and Department of Biology. University of York. York, United Kingdom.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil / Universidade Federal de Minas Gerais. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Sergipe. Programa de Pós-Graduação em Biologia Parasitária. São Cristóvão, SE, Brasil.
Abstract
Infection and clinical cases of leishmaniasis caused by Leishmania infantum in cats have been increasingly reported in several countries, including Brazil. In this study, we used an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and an immunochromatographic test (ICT) based on a recombinant antigen (rKDDR-plus) to detect anti-Leishmania antibodies in cats from an animal shelter in northeastern Brazil. We compared the results with an ELISA using L. infantum crude antigen (ELISA-CA). We also investigated the presence of Leishmania DNA in blood or ocular conjunctival samples as well as the association between Leishmania PCR positivity and serological positivity to feline immunodeficiency virus (FIV), feline leukemia virus (FeLV) and Toxoplasma gondii. Concerning serological assays, a higher positivity was detected using the ICT-rKDDR-plus (7.5%; 7/93) as compared to ELISA-rKDDR-plus (5.4%; 5/93) and ELISA-CA (4.3%; 4/93). Upon PCR testing, 52.7% (49/93) of the ocular conjunctival swabs and 48.3% (44/91) of the blood samples were positive. Together, PCR and serological testing revealed overall positivities of 73.1% (68/93) and 12.9% (12/93), respectively. Among PCR-positive samples, 45.5% (31/68) showed co-infection with FIV, 17.6% (12/68) with FeLV, and 82.3% (56/68) with T. gondii. More than half of the PCR-positive cats showed at least one clinical sign suggestive of leishmaniasis (58.8%; 40/68) and dermatological signs were the most frequent ones (45.5%; 31/68). Both tests employing the recombinant antigen rKDDR-plus (i.e., ICT-rKDDR-plus and ELISA-rKDDR-plus) detected more positive cats than the ELISA-CA but presented low overall accuracy. PCR testing using either blood or ocular conjunctival samples detected much more positive cats than serological tests.
Keywords in Portuguese
Leishmaniose felinaDiagnóstico imunológico
rKDDR-plus
Coinfecções por Leishmania
Sinais clínicos
Keywords
Feline leishmaniasisImmunological diagnosis
rKDDR-plus
Leishmania coinfections
Clinical signs
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