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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/47233
ESSENTIAL OIL FROM BARK OF ANIBA PARVIFLORA (MEISN.) MEZ (LAURACEAE) REDUCES HEPG2 CELL PROLIFERATION AND INHIBITS TUMOR DEVELOPMENT IN A XENOGRAFT MODEL
Author
Oliveira, Felipe P. de
Rodrigues, Ana Carolina Borges da Cruz
Lima, Emilly J. S. P. de
Silva, Valdenizia Rodrigues
Santos, Luciano de S.
Anunciação, Talita A. da
Nogueira, Mateus Lima
Soares, Milena Botelho Pereira
Dias, Rosane Borges
Rocha, Clarissa Araújo Gurgel
Duvoisin Junior, Sérgio
Albuquerque, Patrícia Melchionna
Lima, Emerson Silva
Gonçalves, José Francisco de Carvalho
Bataglion, Giovana Anceski
Costa, Emmanoel Vilaça
Silva, Felipe Moura Araujo da
Koolen, Hector Henrique Ferreira
Bezerra, Daniel Pereira
Rodrigues, Ana Carolina Borges da Cruz
Lima, Emilly J. S. P. de
Silva, Valdenizia Rodrigues
Santos, Luciano de S.
Anunciação, Talita A. da
Nogueira, Mateus Lima
Soares, Milena Botelho Pereira
Dias, Rosane Borges
Rocha, Clarissa Araújo Gurgel
Duvoisin Junior, Sérgio
Albuquerque, Patrícia Melchionna
Lima, Emerson Silva
Gonçalves, José Francisco de Carvalho
Bataglion, Giovana Anceski
Costa, Emmanoel Vilaça
Silva, Felipe Moura Araujo da
Koolen, Hector Henrique Ferreira
Bezerra, Daniel Pereira
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Escola Superior de Ciências da Saúde. Grupo de Metabolômica e Espectrometria de Massas. Boca do Acre, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil / Universidade Federal da Bahia. Faculdade de Medicina. Salvador, BA, Brasil / Universidade Federal da Bahia. Faculdade de Odontologia. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil / Universidade Federal da Bahia. Faculdade de Medicina. Salvador, BA, Brasil / Universidade Federal da Bahia. Faculdade de Odontologia. Salvador, BA, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Escola Superior de Tecnologia. Grupo de Pesquisa Química Aplicada à Tecnologia. Boca do Acre, AM, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Escola Superior de Tecnologia. Grupo de Pesquisa Química Aplicada à Tecnologia. Boca do Acre, AM, Brasil.
Universidade Federal do Amazonas. Faculdade de Ciências Farmacêuticas. Manaus, AM, Brasil.
Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia. Coordenação de Dinâmica Ambiental. Laboratório de Fisiologia e Bioquímica Vegetal. Manaus, AM, Brasil.
Universidade Federal do Amazonas. Instituto de Ciências Exatas. Departamento de Química. Manaus, AM, Brasil.
Universidade Federal do Amazonas. Instituto de Ciências Exatas. Departamento de Química. Manaus, AM, Brasil.
Universidade Federal do Amazonas. Centro de Apoio Multidisciplinar. Divisão de Central Analítica. Manaus, AM, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Escola Superior de Ciências da Saúde. Grupo de Metabolômica e Espectrometria de Massas. Boca do Acre, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Escola Superior de Ciências da Saúde. Grupo de Metabolômica e Espectrometria de Massas. Boca do Acre, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil / Universidade Federal da Bahia. Faculdade de Medicina. Salvador, BA, Brasil / Universidade Federal da Bahia. Faculdade de Odontologia. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil / Universidade Federal da Bahia. Faculdade de Medicina. Salvador, BA, Brasil / Universidade Federal da Bahia. Faculdade de Odontologia. Salvador, BA, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Escola Superior de Tecnologia. Grupo de Pesquisa Química Aplicada à Tecnologia. Boca do Acre, AM, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Escola Superior de Tecnologia. Grupo de Pesquisa Química Aplicada à Tecnologia. Boca do Acre, AM, Brasil.
Universidade Federal do Amazonas. Faculdade de Ciências Farmacêuticas. Manaus, AM, Brasil.
Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia. Coordenação de Dinâmica Ambiental. Laboratório de Fisiologia e Bioquímica Vegetal. Manaus, AM, Brasil.
Universidade Federal do Amazonas. Instituto de Ciências Exatas. Departamento de Química. Manaus, AM, Brasil.
Universidade Federal do Amazonas. Instituto de Ciências Exatas. Departamento de Química. Manaus, AM, Brasil.
Universidade Federal do Amazonas. Centro de Apoio Multidisciplinar. Divisão de Central Analítica. Manaus, AM, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Escola Superior de Ciências da Saúde. Grupo de Metabolômica e Espectrometria de Massas. Boca do Acre, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil.
Abstract
Aniba parviflora (MEISN.) MEZ (Lauraceae) is an aromatic plant of the Amazon rainforest, which has a tremendous commercial value in the perfumery industry; it is popularly used as flavoring sachets and aromatic baths. In Brazilian folk medicine, A. parviflora is used to treat victims of snakebites. Herein, we analyzed the chemical composition of A. parviflora bark essential oil (EO) and its effect on the growth of human hepatocellular carcinoma HepG2 cells in vitro and in vivo. EO was obtained by hydrodistillation and characterized by GC-MS and GC-FID. The main constituents of EO were linalool (16.3±3.15), α-humulene (14.5±2.41%), δ-cadinene (10.2±1.09%), α-copaene (9.51±1.12%) and germacrene B (7.58±2.15%). Initially, EO’s cytotoxic effect was evaluated against five cancer cell lines (HepG2, MCF-7, HCT116, HL-60 and B16-F10) and one non-cancerous one (MRC-5), using the Alamar blue method after 72 h of treatment. The calculated IC50 values were 9.05, 22.04, >50, 15.36, 17.57, and 30.46 μg/mL, respectively. The best selectivity was for HepG2 cells with a selective index of 3.4. DNA Fragmentation and cell cycle distribution were quantified in HepG2 cells by flow cytometry after a treatment period of 24 and 48 h. The effect of EO on tumor development in vivo was evaluated in a xenograft model using C.B-17 SCID mice engrafted with HepG2 cells. In vivo tumor growth inhibition of HepG2 xenograft at the doses of 40 and 80 mg/kg were 12.1 and 62.4%, respectively.
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